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UltraBio™ Multiplex Amplification Mix

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基本描述

别名 UltraBio™ 多重 PCR 预混液
规格或纯度 BioReagent, 无DNA酶和RNA酶, PCR试剂, for DNA and RNA applications, 分子生物学级
稳定性与储存 Store at -20℃ long term (12 months). Avoid freeze/thaw cycle. Upon receipt, it is recommended to aliquot.
英文名称 UltraBio™ Multiplex PCR Master Mix
储存温度 -20°C储存,避免反复冻融
运输条件 超低温冰袋运输
产品介绍

Ul

UltraBio™ Multiple Amplification Mix 是一款通用型多重扩增试剂,可应用于微生物/遗传突变检测多重扩增子文库构建。本试剂兼容超多重扩增,panel 引物重数范围为 1~1500+重,扩增长度范围为100~1800bp,GC 含量范围为 13%~75%,模板投入量低至 1ng。
       本试剂原料经过严格的背景菌质控,可有效预防本底扩增导致的假阳性,同时严格的质量控制和功能验证,保证扩增的稳定性和重复性。

       本试剂适用于二代测序多重靶向扩增方法微生物/遗传突变检测。

自备材料
仪器:PCR 仪、移液器、磁力架、微型离心机、涡旋仪、琼脂糖凝胶电泳系统、紫外凝胶成像分析系统、Agilent Bioanalyzer 2100或替代仪器;
试剂: 琼脂糖、1×TAE 溶液、核酸染料、DNAmarker、 Ampure XP 磁珠或替代产品、无水乙醇(新鲜配置 80%乙醇)、无核酸酶水;
耗材:1.5 ml 离心管、0.2 ml PCR 管、移液枪头(无DNase/RNase)。

使用说明

一、多重扩增及产物检测
1、将UltraBio™ Multiplex Amplification mix 取出解冻;涡旋混匀瞬时离心,置于冰上备用。
2、在 0.2 ml PCR 管中配制如下反应混合液:

组分
体积/ 反应 (μl)
终浓度
UltraBio™ Multiplex Amplification mix
2.5
4x
Primer Mix
120nM (2.5~100nM)
模板 DNA
X
10ng (1~100ng)
无核酸酶水
Up to10
/
Total
10/

注: 常规体系 Total 体积为10μl,可调整体范围为10~50μl;当体系体积放大时,UltraBio™ Multiplex Amplification mix 体积需等比例放大。

3、涡旋混匀,瞬时离心后将反应液收集至管底。
4、将上述 PCR 管置于 PCR 仪,运行以下反应程序:


注:

T:退火温度需要根据多重引物的退火温度 T 来设定。

**:常规为 25 cycles;可根据模板投入量适当调整。

5、第一步扩增产物可用 2 %琼脂糖电泳检测其产物分布情况或在Agilent 2100 Bioanalyzer 上进行长度分布检测。

二、扩增产物磁珠纯化

1、将AmpureXP 磁珠或替代产品从冰箱中取出平衡至室温,涡旋混匀。
2、将第一步扩增产物体积用无核酸酶水补至50ul,加入60 μl(1.2×)磁珠,充分涡旋混匀后室温静置 5 min。

3、短暂离心后将离心管置于磁力架上静置 3~5 min,待溶液澄清后,小心移去上清。
4、保持离心管置于磁力架上,往管中加入 200 μl 新鲜配置的 80%乙醇,室温静置 30 sec,小心移去上清。
5、重复第4操作,80%乙醇共洗涤两次。尽量弃 80%乙醇。
6、保持离心管置于磁力架上,开盖静置 2~3 min 使磁珠干燥至哑光。
7、加入 22 μl 的无核酸酶水重悬磁珠,充分涡旋混匀后,室温静置 2 min,将离心管短暂离心后置于磁力架上静置 1~2 min,待溶液澄清后,小心移取 20 μl 上清至新的 0.2 ml PCR 管中,进行下一步反应。纯化产物可在-20°C 长期保存。

UltraBio™ Multiple Amplification Mix is a universal multiplex amplification reagent that can be used for constructing multiplex amplicon libraries for microbial/genetic mutation detection. It is compatible with ultra-multiplex amplification, with a primer number range of 1 to 1500, amplicon length range of 100 to 1800 bp, GC content range of 13% to 75%, and a minimum template input amount of 1 ng. 

   The reagent undergoes strict background microbe quality control to minimize false positives from non-specific amplification. 

   Rigorous functional validation ensures high stability and reproducibility, making it ideal for NGS-based multiplex targeted amplification in microbial/genetic mutation detection.

Self-Supplied Materials

1. Instruments

    PCR thermal cycler, Pipettes, Magnetic stand, Microcentrifuge, Vortex mixer, Agarose gel electrophoresis system, UV gel imaging system, Agilent Bioanalyzer 2100 (or equivalent).

2. Reagents

    Agarose, 1× TAE buffer, Nucleic acid dye, DNA marker, Ampure XP beads (or equivalent), Freshly prepared 80% ethanol, Nuclease-free water.

3. Consumables

    1.5 mL microcentrifuge tubes, 0.2 mL PCR tubes, DNase/RNase-free pipette tips.

Protocol

I. Multiplex Amplification & Product Verification

  1. Reagent Preparation

    • Thaw UltraBio™ Multiplex Amplification Mix on ice.

    • Vortex briefly and centrifuge before use.

  2. Reaction Setup (10 μL Standard Volume)

  3. Component
    Volume per Reaction
    Final Concentration
    UltraBio™ Multiplex Amplification mix
    2.5 μL
    4x
    Primer Mix
    1 μL20nM (2.5~100nM)
    Template DNA
    X μL
    10ng (1~100ng)
    Nuclease-free water
    Up to10 μL
    /
    Total
    10 μL/

Note:

  • Total reaction volume can be scaled to 10–50 μL (adjust mix proportionally).

  • Primer concentration and annealing temperature (T) should be optimized for each panel.

  1. Mixing & Centrifugation

    • Vortex gently and centrifuge briefly to collect liquid.

  2. PCR Cycling Program



*T: Annealing temperature depends on primer panel (optimize empirically).
Cycle number: Adjust based on template input (default: 25 cycles).

  1. Product QC: Analyze amplification success via 2% agarose gel electrophoresis or Agilent 2100 Bioanalyzer.

II. Amplicon Purification (Ampure XP Beads)

  1. Bead Equilibration

    • Warm Ampure XP beads to room temperature; vortex thoroughly.

  2. Bead Binding

    • Dilute PCR products to 50 μL with nuclease-free water.

    • Add 60 μL beads (1.2× ratio), vortex, and incubate 5 min at RT.

  3. Wash Steps

    • Place tubes on a magnetic stand for 3–5 min; discard supernatant.

    • Wash twice with 200 μL fresh 80% ethanol (30 sec per wash).

    • Air-dry beads for 2–3 min until matte.

  4. Elution

    • Resuspend beads in 22 μL nuclease-free water; incubate 2 min at RT.

    • Transfer 20 μL supernatant to a new PCR tube.

    • Store purified products at –20°C.

质检证书(CoA,COO,BSE/TSE 和分析图谱)

C of A & Other Certificates(BSE/TSE, COO):
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